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• Transparente Kulturkammer mit einem abnehmbaren Glasträger, auf den adhärente Zellkulturen oder Gewebe (z. B. Biopsien) gelegt werden • Bioreaktor mit einem kontinuierlichen Fluss von Medium oder Reagenzien • Verschiedene Ausführungen 6, 12 oder 24 Wells
Anwendungen: • Imaging Analyse in Echtzeit oder nicht von 2D- und 3D-Kulturen • Analyse der Auswirkungen eines Medikaments auf eine Zellkultur auf dynamische und physiologische Weise • Das Starterkit enthält alles, was für den Start der Experimente benötigt wird: LB1 mit Klemme, Schläuchen, Anschlüssen und Mischkammern
• Zwei miteinander verbundene transparente Kulturkammern, in die ein Kultureinsatz oder eine spezifische Membran eingelegt werden kann • Bioreaktor mit mehreren Möglichkeiten des Medienflusses zur Anpassung an die verschiedenen Forschungsprotokolle (Luft/Flüssigkeit, Flüssigkeit/Flüssigkeit-Methode...) • Verschiedene Einsatzgrößen 6, 12 oder 24 Wells
Zwei Konfigurationen: • Tangentiale Flusskonfiguration: Zur Untersuchung physiologischer Barrieren werden der apikale und der basale Pol von 2 unabhängigen Flüssen parallel zur Membran perfundiert. • Infusionsfluss-Konfiguration: Für die 3D-Studie kreuzen die Flusslinien die Zellen vertikal. Es können zwei Arten von Konfigurationen gewählt werden.
Anwendungen: • Möglichkeit, verschiedene Zelltypen oder Gewebe aus verschiedenen Organen (Leber, Darm, Lunge, Haut...) zu untersuchen, die durch Verknüpfung von LiveBoxen miteinander verbunden werden können, um die Auswirkungen ihres Austauschs in derselben Umgebung zu bewerten • 3D-Suspensionszellkultur, ALI-Kultur-Methode • Simulation von physiologischen Barrieren durch Schaffung einer in vivo-nahen Umgebung • Das Starterkit enthält alles, was für den Start der Experimente benötigt wird: LB2 mit Klemme, porösen Membranen, Schläuchen, Anschlüssen und Mischkammern
• Kompakte Pumpe, die im Inkubator platziert wird, um dynamische Kulturen zu starten und in kontrollierten Temperatur- und CO2-Prozentbedingungen zu halten • Beste Möglichkeit zur Reproduktion der Versuchsbedingungen nahe der In-vivo-Umgebung • Durchflussrate im Bereich von 50 µl/min bis 500 µl/min • 2 Köpfe und 4 unabhängige Flüssigkeitskreisläufe